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「ノーザンブロッティング」の版間の差分

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[[File:Northern blot diagram.png|thumb|212x212px|ノーザンブロッティングによるRNAの検出の流れを示した図。抽出したRNAをゲル（黄色）を用いて電気泳動して分離したのち、それをメンブレン（赤色）に転写した上で、核酸プローブ（緑色の矢印）を用いて目的のRNAのみを検出する。]]
'''ノーザンブロッティング'''({{lang-en-short|Northern blotting}})とは、[[分子生物学]]研究において用いられる、[[リボ核酸|RNA]]を検出する手法である。[[デオキシリボ核酸|DNA]]を検出する[[サザンブロッティング]]と同様の原理によることから、一種の洒落として名づけられた（「サザンブロッティング」は開発者[[エドウィン・サザン]]の名からとられている）。
'''ノーザンブロッティング'''({{lang-en-short|[[:w:Northern blotting|Northern blotting]]}}、'''ノーザンブロット''' Nothern blot とも)あるいは'''RNAブロッティング'''（{{lang-en-short|RNA blotting}}、'''RNAブロット''' RNA blot とも）<ref name=Gilbert2000>Gilbert, S. F. (2000) Developmental Biology, 6th Ed. Sunderland MA, Sinauer Associates.</ref><ref name = photo>{{Cite web |url=https://photosyn.jp/pwiki/index.php?RNA%E3%83%96%E3%83%AD%E3%83%83%E3%83%88%E6%B3%95 |title=RNAブロット法 |work = 光合成事典|publisher=日本光合成学会 |accessdate=2020-09-21}}</ref>とは、[[分子生物学]]研究において用いられる、[[リボ核酸|RNA]]を検出することによって[[遺伝子]]の[[遺伝子発現|発現]]を解析する手法である<ref name="Alberts2008" /><ref name=Kevil1997>Kevil, C. G., Walsh, L., Laroux, F. S., Kalogeris, T., Grisham, M. B., Alexander, J. S. (1997) An Improved, Rapid Northern Protocol. Biochem. and Biophys. Research Comm. 238:277–279.</ref>。「ノーザンブロッティング」の名称は、[[デオキシリボ核酸|DNA]]を検出する[[サザンブロッティング]]と同様の原理によることから、一種の洒落として名づけられたニックネームである（「サザンブロッティング」は開発者[[エドウィン・サザン]]の名からとられている）<ref name = photo /><ref name=Alberts2008>Alberts, B., Johnson, A., Lewis, J. Raff, M., Roberts, K., Walter, P. 2008. Molecular Biology of the Cell, 5th ed. Garland Science, Taylor & Francis Group, NY, pp 538–539.</ref>。


ノーザンブロッティングを用いることによって、[[形態形成]]や[[細胞分化]]、[[病気]]の発病などの様々な状況下で、ある特定の遺伝子がどのように発現しているかを比較・解析することが可能である<ref name=Schlamp2008>{{cite journal | last1 = Schlamp | first1 = K. | last2 = Weinmann | first2 = A. | last3 = Krupp | first3 = M. | last4 = Maass | first4 = T. | last5 = Galle | first5 = P. R. | last6 = Teufel | first6 = A. | year = 2008 | title = BlotBase: A northern blot database | url = | journal = Gene | volume = 427 | issue = 1–2| pages = 47–50 | doi = 10.1016/j.gene.2008.08.026 | pmid = 18838116 }}</ref>。ノーザンブロッティングにおいては、まずサンプルから抽出したRNAを[[電気泳動]]によってそのサイズごとに分離したのち、メンブレン（フィルター膜）への転写を行なう。その後RNAが転写されたメンブレン上で、標識した{{仮リンク|核酸プローブ|en|hybridization probe}}を用いて目的とするRNAの量、サイズを検出する。なお本来「ノーザンブロッティング」という言葉が指すのは、RNAを電気泳動ゲルからメンブレンへ転写（「ブロッティング」）する過程のみである。しかし、一般的には電気泳動、検出といったその前後の一連の過程を合わせて「ノーザンブロッティング」と呼ぶことが多い<ref name = photo/><ref name=Trayhurn1996>Trayhurn, P. (1996) Northern Blotting. Pro. Nutrition Soc. 55:583–589.</ref>。ノーザンブロッティングの手法は1977年に[[スタンフォード大学]]のJames Alwine、[[:w:David Kemp (Australian scientist)|David Kemp]]、そしてGeorge Starkによって[[米国科学アカデミー紀要]]に発表された<ref>{{cite journal |vauthors=Alwine JC, Kemp DJ, Stark GR |title=Method for detection of specific RNAs in agarose gels by transfer to diazobenzyloxymethyl-paper and hybridization with DNA probes |journal=Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. |volume=74 |issue=12 |pages=5350–4 |year=1977 |pmid=414220| doi = 10.1073/pnas.74.12.5350 |pmc=431715}}</ref>。サザンブロッティングとの主な違いは、ノーザンブロッティングにおいてはDNAではなくRNAが解析の対象となることである<ref name=Bor2006>{{Cite journal | last = Bor | year = 2006 | first1 = Y.C. | last2 = Swartz | first2 = J. | last3 = Li | first3 = Y. | last4 = Coyle | first4 = J. | last5 = Rekosh | first5 = D. | last6 = Hammarskjold | first6 = Marie-Louise | title = Northern Blot analysis of mRNA from mammalian polyribosomes | journal = Nature Protocols | doi = 10.1038/nprot.2006.216 | postscript = <!--None--> }}</ref>。
抽出した RNA を[[電気泳動]]によって展開し、メンブレンに転写したのち、標識した核酸プローブを用いて検出を行う。一般に[[転写]]産物の量やサイズを調べるために行う。


==手法==
細胞からフェノール試薬などを用いて核酸を抽出した後、[[リボヌクレアーゼ|RNase]]フリーの[[デオキシリボヌクレアーゼ|DNase]]によってDNAのみを消化し、アガロース[[電気泳動]]などによってゲル上に展開する。このゲルを拡散もしくは吸引によってメンブレンに転写（ブロット）し、さらに検出したいRNA配列に相補的な核酸を標識した核酸プローブを[[ハイブリダイゼーション]]させることで標的RNAの量、サイズを検出する。標識には[[放射性同位体|RI]]を用いた方法があるが、最近は[[ジゴキシゲニン|DIG]]と抗体を用いたnonRI法が一般的。
===概要===
一般的なノーザンブロッティングの手順<ref name="Trayhurn1996" /><ref name = GE>{{Cite web |url=https://www.cytivalifesciences.co.jp/contact/imaging/pdf/238491.pdf |date=2004-12|title=蛍光検出基礎知識 検出の達人への道⑤ 核酸のブロッティングと標識・検出 |work = 蛍光アプリケーション～milestone|publisher=[[GEヘルスケア・ジャパン|GEヘルスケアバイオサイエンス]] |accessdate=2020-09-21}}</ref>は、まずホモジェナイズ（均質化）された[[組織]]または[[細胞]]サンプルから[[RNA]]を抽出することから始まる。[[真核生物]]の[[メッセンジャーRNA]](mRNA)は、その末端に[[ポリアデニル化|ポリA尾部]]を持つことから、それに結合するオリゴdTを用いた[[クロマトグラフィー]]によって単離することができる<ref name=Durand1993>{{cite journal | last1 = Durand | first1 = G. M. | last2 = Zukin | first2 = R. S. | year = 1993 | title = Developmental Regulation of mRNAs Encoding Rat Brain Kainate/AMPA Receptors: A Northern Analysis Study | url = | journal = J. Neurochem. | volume = 61 | issue = 6| pages = 2239–2246 | doi = 10.1111/j.1471-4159.1993.tb07465.x | pmid = 8245974 }}</ref><ref name=Mori1991>{{cite journal | last1 = Mori | first1 = H. | last2 = Takeda-Yoshikawa | first2 = Y. | last3 = Hara-Nishimura | first3 = I. | last4 = Nishimura | first4 = M. | year = 1991 | title = Pumpkin malate synthase Cloning and sequencing of the cDNA and Northern blot analysis | url = | journal = Eur. J. Biochem. | volume = 197 | issue = 2| pages = 331–336 | doi = 10.1111/j.1432-1033.1991.tb15915.x | pmid = 1709098 }}</ref>。こうして得られたRNAサンプルはゲル[[電気泳動]]によって分離される。電気泳動に用いるゲルは崩れやすく、またRNAの検出に用いる{{仮リンク|核酸プローブ|en|hybridization probe}}はゲルの基質に侵入することができないので、分離されたRNAは続いてメンブレンと呼ばれる[[ナイロン]]膜へ、吸引もしくは[[毛細管|キャピラリー]]を用いた拡散によって転写（ブロット）される。[[Image:capillary blot setup.svg|thumb|キャピラリー（[[毛細管]]）を用いて電気泳動ゲルからメンブレンへRNAを転写する装置の例。[[毛細管現象]]を利用して下側に位置するゲル（黄色）から上方のメンブレン（赤）へRNAを移動させる。]]

ナイロンでできたメンブレンは正の[[電荷]]を帯びているため、負の電荷を帯びている[[核酸]]を効率よく吸着することができる。転写に用いる[[緩衝液|バッファー]]は[[ホルムアミド]]を含んでおり、RNAとプローブの[[ハイブリダイゼーション]]に必要な温度を下げる働きを果たしている。これにより、反応を低温で行うことができ、高温によるRNAの分解を防ぐことができる<ref name=Yang1993>{{cite journal | last1 = Yang | first1 = H. | last2 = McLeese | first2 = J. | last3 = Weisbart | first3 = M. | last4 = Dionne | first4 = J.-L. | last5 = Lemaire | first5 = I. | last6 = Aubin | first6 = R. A. | year = 1993 | title = Simplified high throughput protocol for Northern hybridization | url = | journal = Nucleic Acids Research | volume = 21 | issue = 14| pages = 3337–3338 | doi = 10.1093/nar/21.14.3337 | pmid = 8341618 | pmc = 309787 }}</ref>。RNAがメンブレンに転写された後、[[紫外線|UV]]照射や熱処理によって、RNAをメンブレンへ固定化する。その後、標識のついたプローブをRNAとハイブリダイズさせる。この段階でハイブリダイゼーションの効率と特異性に影響を与える因子として、イオン強度や粘度、RNAおよびプローブの長さ、不対合[[塩基対]]の数、[[塩基]]組成などが挙げられる<ref name=Streit2009>{{cite journal | last1 = Streit | first1 = S. | last2 = Michalski | first2 = C. W. | last3 = Erkan | first3 = M. | last4 = Kleef | first4 = J. | last5 = Friess | first5 = H. | year = 2009 | title = Northern blot analysis for detection of RNA in pancreatic cancer cells and tissues | url = | journal = Nature Protocols | volume = 4 | issue = 1| pages = 37–43 | pmid = 19131955 | doi = 10.1038/nprot.2008.216 }}</ref>。ハイブリダイゼーションののちメンブレンを洗浄して、非特異的な結合を生じているプローブを洗い流す。ハイブリダイゼーションしたプローブとRNAの複合体を、標識の種類によって[[X線写真]]などの方法によって検出し、{{仮リンク|デンシトメトリー|en|densitometry}}によってそのシグナルの強さを定量し、RNAの量を定量する。[[対照実験]]（[[陰性対照|ネガティブコントロール]]）として、[[マイクロアレイ]]や[[RT-PCR]]によって標的のRNAが存在しないことが確認されているサンプルを用いることもある<ref name="Streit2009" />。

===ゲル===
[[Image:RNA agarose gel.svg|thumb|[[ホルムアルデヒド]]を含んだ[[アガロース]]ゲルで電気泳動された真核生物の全RNA。28S（最も上のバンド）、および18S（その下の明るいバンド）[[リボソームRNA]]が目立つ。左側にはRNAラダーが一緒に泳動されている。]]
RNAサンプルはRNAの[[RNA#RNAの高次構造|二次構造]]形成を阻害するための[[変性剤]]として[[ホルムアルデヒド]]を含んだ[[アガロースゲル電気泳動|アガロースゲルを用いた電気泳動]]によって分離されるのが一般的である<ref name="Streit2009" /><ref name=Yamanka1997>{{cite journal | last1 = Yamanaka | first1 = S. | last2 = Poksay | first2 = K. S. | last3 = Arnold | first3 = K. S. | last4 = Innerarity | first4 = T. L. | year = 1997 | title = A novel translational repressor mRNA is edited extensively in livers containing tumors caused by the transgene expression of the apoB mRNA-editing enzyme | url = | journal = Genes Dev. | volume = 11 | issue = 3| pages = 321–333 | doi = 10.1101/gad.11.3.321 | pmid = 9030685 | doi-access = free }}</ref>。泳動後のゲルを[[エチジウムブロマイド]]で染色し、UV照射下で観察することで、ブロッティングの前にRNAの量と品質を確認することもある<ref name="Streit2009" />。[[尿素]]を加えた[[ポリアクリルアミドゲル電気泳動|ポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動]]でもRNAを分離することができるが、これは断片化したRNAや[[マイクロRNA]]に対して用いられることが多い<ref name=Valoczi2004>Valoczi, A., Hornyik, C., Varga, N., Burgyan, J., Kauppinen, S., Havelda, Z. (2004) Sensitive and specific detection of microRNAs by northern blot analysis using LNA-modified oligonucleotide probes. Nuc. Acids Research. 32: e175.</ref>。 サンプルの隣にはRNAラダー（[[分子量]]マーカー）を共に泳動して得られたRNAの長さなどを調べることも多いが、全RNAサンプルの場合は[[リボソームRNA]]をマーカーとして代わりに用いることもできる<ref name="Streit2009" />。リボソームの大[[サブユニット]]は分子量28[[沈降係数|S]]（約2,000 [[塩基対]]）、小サブユニットは分子量18S（約2,000 塩基対）であるため、2本の目立つバンドが泳動像には現れる（右図）<ref name="Streit2009" /><ref name=Gortner1996>{{cite journal | last1 = Gortner | first1 = G. | last2 = Pfenninger | first2 = M. | last3 = Kahl | first3 = G. | last4 = Weising | first4 = K. | year = 1996 | title = Northern blot analysis of simple repetitive sequence transcription in plants | url = | journal = Electrophoresis | volume = 17 | issue = 7| pages = 1183–1189 | doi = 10.1002/elps.1150170702 | pmid = 8855401 }}</ref>。

===プローブ===
ノーザンブロッティングにおけるRNAの検出には、標的RNAの一部または全部と相補的な[[塩基配列]]の[[核酸]]でできたプローブを用いる。プローブはDNAでもRNAでもよく、標的RNAと相補的な最低でも25塩基対以上の[[オリゴヌクレオチド]]であれば用いることができる<ref name="Trayhurn1996" />。一般に、[[in vitro]]での[[転写 (生物学)|転写]]反応によって作成されたRNAプローブの方が、複数回の洗浄に耐え、バックグランドの[[ノイズ]]を一部低減することができる<ref name="Streit2009" />。プローブは[[放射性同位体]]（<sup>32</sup>[[リンの同位体|P]]）、または[[アルカリホスファターゼ]]や[[西洋ワサビペルオキシダーゼ]]（HRP）などを用いた[[化学発光]]による方法で標識されるため、前者であれば写真の感光、後者であれば発光というかたちでプローブの存在する位置（すなわち、標的RNAの存在する位置）を検出できる<ref name=Engler-Blum1993>{{cite journal | last1 = Engler-Blum | first1 = G. | last2 = Meier | first2 = M. | last3 = Frank | first3 = J. | last4 = Muller | first4 = G. A. | year = 1993 | title = Reduction of Background Problems in Nonradioactive Northern and Southern Blot Analysis Enables Higher Sensitivity Than 32P-Based Hybridizations | url = | journal = Anal. Biochem. | volume = 210 | issue = 2| pages = 235–244 | doi = 10.1006/abio.1993.1189 | pmid = 7685563 }}</ref>。化学発光による標識の方法は主に2つに分けられる。つまり、プローブを化学発光を起こす酵素で直接標識して検出する方法と、プローブを何らかの小分子（例えば[[ビオチン]]）で標識し、それと結合する別の分子（例えば[[アビジン]]か[[ストレプトアビジン|ストレプトアジビン]]）に化学発光を起こす酵素（例えばHRP）を繋げてプローブと結合させることで化学発光を起こす方法である<ref name="Streit2009" />。放射性同位体による標識に比べ、化学発光による標識は短時間で検出が可能で感度も高い。また、前者は[[放射性物質]]を扱う事による健康への危険も伴うので、近年では放射性同位体を用いた方法よりも化学発光を用いた方法を用いる研究者が多い<ref name="Engler-Blum1993" />。一枚のメンブレンで最大で5回、異なるプローブによる異なる標的遺伝子の検出を行うことができることが分かっている<ref name="Yang1993" />。

==応用==
ノーザンブロッティングによって異なる[[組織 (生物学)|組織]]、[[器官]]、環境ストレスのレベル、または[[感染]]の有無、何らかの処理の有無などによってある特定の[[遺伝子]]の[[遺伝子発現|発現]]がどのように変動しているかを解析することができる<ref name="Mori1991" /><ref name="Liang1995">Liang, P. Pardee, A. B. (1995) Recent advances in differential display. Current Opinion Immunol. 7: 274–280.</ref><ref name=Baldwin1999>Baldwin, D., Crane, V., Rice, D. (1999) A comparison of gel-based, nylon filter and microarray techniques to detect differential RNA expression in plants. Current Opinion in Plant Biol. 2: 96–103.</ref>。例えばノーザンブロッティングは[[悪性腫瘍|がん細胞]]において通常の細胞と比べて[[がん遺伝子]]が過剰発現され、[[がん抑制遺伝子]]の発現は下がっていることを示すのに用いられてきた<ref name="Streit2009" />。他の例として、[[移植 (医療)|移植]]された臓器の[[拒絶反応]]における遺伝子の発現変化を調べるのに用いられたこともある<ref name="Utans1994">{{cite journal|last1=Utans|first1=U.|last2=Liang|first2=P.|last3=Wyner|first3=L. R.|last4=Karnovsky|first4=M. J.|last5=Russel|first5=M. E.|year=1994|title=Chronic cardiac rejection: Identification of five upregulated genes in transplanted hearts by differential mRNA display|url=|journal=Proc. Natl. Acad. Sci. USA|volume=91|issue=14|pages=6463–6467|doi=10.1073/pnas.91.14.6463|pmid=8022806|pmc=44222}}</ref>。ある特定の条件における遺伝子発現のパターンから、その遺伝子の機能を推測することもできる。RNAはまずそのサイズによって分離されるが、一つのプローブを用いてサイズの異なる複数のRNAが検出されれば、同一遺伝子における[[選択的スプライシング]]の存在、または共通する{{仮リンク|配列モチーフ|en|Sequence motif}}を持つ複数の遺伝子の存在などが示唆されることになる<ref name="Durand1993" /><ref name="Gortner1996" />。[[突然変異体]]における遺伝子の欠失や転写後修飾の異常によってRNAサイズの違いが生じる場合もあるが、これもノーザンブロッティングによって検出が可能である。同一遺伝子の中でも異なる標的配列に対して複数のプローブを設計することで、変異体においてRNAのどの部分で欠失が起こっているかを調べることもできる<ref name="Alberts2008" />。

==利点と欠点==
ノーザンブロッティングと同様に遺伝子発現を解析する手法として、[[RT-PCR]]、{{仮リンク|ヌクレアーゼプロテクションアッセイ|en|Nuclease protection assay}}、[[DNAマイクロアレイ]]、{{仮リンク|RNA-seq|en|RNA-seq}}、[[SAGE法]]などが挙げられ、それぞれが場面に応じて使い分けられている<ref name="Schlamp2008" /><ref name="Trayhurn1996" />。例えばそのうちマイクロアレイを例にとると、この手法は通常1から少数の遺伝子のみを対象にするノーザンブロッティングと比べ、何千もの遺伝子の発現を同時に可視化できる点が優れている<ref name="Baldwin1999" /><ref name="Taniguchi2001" />。逆にノーザンブロッティングは、マイクロアレイでは検出できないような遺伝子発現における微小な差異を検出できることがある<ref name=Taniguchi2001>{{cite journal | last1 = Taniguchi | first1 = M. | last2 = Miura | first2 = K. | last3 = Iwao | first3 = H. | last4 = Yamanaka | first4 = S. | year = 2001 | title = Quantitative Assessment of DNA Microarrays – Comparison with Northern Blot Analysis | url = | journal = Genomics | volume = 71 | issue = 1| pages = 34–39 | doi = 10.1006/geno.2000.6427 | pmid = 11161795 }}</ref>。

RT-PCRと比較すると、ノーザンブロッティングは感度が低いという欠点があるものの、特異性が非常に高いため、[[偽陽性]]シグナルを検出してしまうことが少ないという利点がある<ref name="Streit2009" />。その他、上述のようにRNAのサイズを検出し選択的スプライシングなどについても解析できる点や、メンブレンが数年単位で保管可能であるため追実験が可能である点などがノーザンブロッティングの利点として挙げられることがある<ref name="Streit2009" />。

ノーザンブロッティングを行う際に頻発するトラブルとして、サンプルに残存していた、または環境中から[[コンタミネーション|混入]]した[[リボヌクレアーゼ]](RNase)によってRNAサンプルが分解されてしまうことが挙げられる。これは使用器具を適切に滅菌すること、[[ジエチルピロカーボネート]](DEPC)といったRNase[[阻害剤]]を用いることなどによって予防できる<ref name="Trayhurn1996" />。また、ノーザンブロッティングで用いられるDEPC、エチジウムブロマイド、放射性同位体といった薬品は、人体にとって危険なものが多いことにも注意が必要である<ref name="Streit2009" />。


==関連項目==
==関連項目==
*[[サザンブロッティング]]
*[[サザンブロッティング]]
*[[ウェスタンブロッティング]]
*[[ウェスタンブロッティング]]

== 出典 ==
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==外部リンク==
==外部リンク==

2020年10月6日 (火) 15:25時点における版

ノーザンブロッティングによるRNAの検出の流れを示した図。抽出したRNAをゲル（黄色）を用いて電気泳動して分離したのち、それをメンブレン（赤色）に転写した上で、核酸プローブ（緑色の矢印）を用いて目的のRNAのみを検出する。

ノーザンブロッティング(英: Northern blotting、ノーザンブロット Nothern blot とも)あるいはRNAブロッティング（英: RNA blotting、RNAブロット RNA blot とも）[1][2]とは、分子生物学研究において用いられる、RNAを検出することによって遺伝子の発現を解析する手法である[3][4]。「ノーザンブロッティング」の名称は、DNAを検出するサザンブロッティングと同様の原理によることから、一種の洒落として名づけられたニックネームである（「サザンブロッティング」は開発者エドウィン・サザンの名からとられている）[2][3]。

ノーザンブロッティングを用いることによって、形態形成や細胞分化、病気の発病などの様々な状況下で、ある特定の遺伝子がどのように発現しているかを比較・解析することが可能である[5]。ノーザンブロッティングにおいては、まずサンプルから抽出したRNAを電気泳動によってそのサイズごとに分離したのち、メンブレン（フィルター膜）への転写を行なう。その後RNAが転写されたメンブレン上で、標識した核酸プローブ（英語版）を用いて目的とするRNAの量、サイズを検出する。なお本来「ノーザンブロッティング」という言葉が指すのは、RNAを電気泳動ゲルからメンブレンへ転写（「ブロッティング」）する過程のみである。しかし、一般的には電気泳動、検出といったその前後の一連の過程を合わせて「ノーザンブロッティング」と呼ぶことが多い[2][6]。ノーザンブロッティングの手法は1977年にスタンフォード大学のJames Alwine、David Kemp、そしてGeorge Starkによって米国科学アカデミー紀要に発表された[7]。サザンブロッティングとの主な違いは、ノーザンブロッティングにおいてはDNAではなくRNAが解析の対象となることである[8]。

手法

概要

一般的なノーザンブロッティングの手順[6][9]は、まずホモジェナイズ（均質化）された組織または細胞サンプルからRNAを抽出することから始まる。真核生物のメッセンジャーRNA(mRNA)は、その末端にポリA尾部を持つことから、それに結合するオリゴdTを用いたクロマトグラフィーによって単離することができる[10][11]。こうして得られたRNAサンプルはゲル電気泳動によって分離される。電気泳動に用いるゲルは崩れやすく、またRNAの検出に用いる核酸プローブ（英語版）はゲルの基質に侵入することができないので、分離されたRNAは続いてメンブレンと呼ばれるナイロン膜へ、吸引もしくはキャピラリーを用いた拡散によって転写（ブロット）される。

キャピラリー（毛細管）を用いて電気泳動ゲルからメンブレンへRNAを転写する装置の例。毛細管現象を利用して下側に位置するゲル（黄色）から上方のメンブレン（赤）へRNAを移動させる。

ナイロンでできたメンブレンは正の電荷を帯びているため、負の電荷を帯びている核酸を効率よく吸着することができる。転写に用いるバッファーはホルムアミドを含んでおり、RNAとプローブのハイブリダイゼーションに必要な温度を下げる働きを果たしている。これにより、反応を低温で行うことができ、高温によるRNAの分解を防ぐことができる[12]。RNAがメンブレンに転写された後、UV照射や熱処理によって、RNAをメンブレンへ固定化する。その後、標識のついたプローブをRNAとハイブリダイズさせる。この段階でハイブリダイゼーションの効率と特異性に影響を与える因子として、イオン強度や粘度、RNAおよびプローブの長さ、不対合塩基対の数、塩基組成などが挙げられる[13]。ハイブリダイゼーションののちメンブレンを洗浄して、非特異的な結合を生じているプローブを洗い流す。ハイブリダイゼーションしたプローブとRNAの複合体を、標識の種類によってX線写真などの方法によって検出し、デンシトメトリー（英語版）によってそのシグナルの強さを定量し、RNAの量を定量する。対照実験（ネガティブコントロール）として、マイクロアレイやRT-PCRによって標的のRNAが存在しないことが確認されているサンプルを用いることもある[13]。

ゲル

ホルムアルデヒドを含んだアガロースゲルで電気泳動された真核生物の全RNA。28S（最も上のバンド）、および18S（その下の明るいバンド）リボソームRNAが目立つ。左側にはRNAラダーが一緒に泳動されている。

RNAサンプルはRNAの二次構造形成を阻害するための変性剤としてホルムアルデヒドを含んだアガロースゲルを用いた電気泳動によって分離されるのが一般的である[13][14]。泳動後のゲルをエチジウムブロマイドで染色し、UV照射下で観察することで、ブロッティングの前にRNAの量と品質を確認することもある[13]。尿素を加えたポリアクリルアミドゲルを用いた電気泳動でもRNAを分離することができるが、これは断片化したRNAやマイクロRNAに対して用いられることが多い[15]。 サンプルの隣にはRNAラダー（分子量マーカー）を共に泳動して得られたRNAの長さなどを調べることも多いが、全RNAサンプルの場合はリボソームRNAをマーカーとして代わりに用いることもできる[13]。リボソームの大サブユニットは分子量28S（約2,000 塩基対）、小サブユニットは分子量18S（約2,000 塩基対）であるため、2本の目立つバンドが泳動像には現れる（右図）[13][16]。

プローブ

ノーザンブロッティングにおけるRNAの検出には、標的RNAの一部または全部と相補的な塩基配列の核酸でできたプローブを用いる。プローブはDNAでもRNAでもよく、標的RNAと相補的な最低でも25塩基対以上のオリゴヌクレオチドであれば用いることができる[6]。一般に、in vitroでの転写反応によって作成されたRNAプローブの方が、複数回の洗浄に耐え、バックグランドのノイズを一部低減することができる[13]。プローブは放射性同位体（32P）、またはアルカリホスファターゼや西洋ワサビペルオキシダーゼ（HRP）などを用いた化学発光による方法で標識されるため、前者であれば写真の感光、後者であれば発光というかたちでプローブの存在する位置（すなわち、標的RNAの存在する位置）を検出できる[17]。化学発光による標識の方法は主に2つに分けられる。つまり、プローブを化学発光を起こす酵素で直接標識して検出する方法と、プローブを何らかの小分子（例えばビオチン）で標識し、それと結合する別の分子（例えばアビジンかストレプトアジビン）に化学発光を起こす酵素（例えばHRP）を繋げてプローブと結合させることで化学発光を起こす方法である[13]。放射性同位体による標識に比べ、化学発光による標識は短時間で検出が可能で感度も高い。また、前者は放射性物質を扱う事による健康への危険も伴うので、近年では放射性同位体を用いた方法よりも化学発光を用いた方法を用いる研究者が多い[17]。一枚のメンブレンで最大で5回、異なるプローブによる異なる標的遺伝子の検出を行うことができることが分かっている[12]。

応用

ノーザンブロッティングによって異なる組織、器官、環境ストレスのレベル、または感染の有無、何らかの処理の有無などによってある特定の遺伝子の発現がどのように変動しているかを解析することができる[11][18][19]。例えばノーザンブロッティングはがん細胞において通常の細胞と比べてがん遺伝子が過剰発現され、がん抑制遺伝子の発現は下がっていることを示すのに用いられてきた[13]。他の例として、移植された臓器の拒絶反応における遺伝子の発現変化を調べるのに用いられたこともある[20]。ある特定の条件における遺伝子発現のパターンから、その遺伝子の機能を推測することもできる。RNAはまずそのサイズによって分離されるが、一つのプローブを用いてサイズの異なる複数のRNAが検出されれば、同一遺伝子における選択的スプライシングの存在、または共通する配列モチーフ（英語版）を持つ複数の遺伝子の存在などが示唆されることになる[10][16]。突然変異体における遺伝子の欠失や転写後修飾の異常によってRNAサイズの違いが生じる場合もあるが、これもノーザンブロッティングによって検出が可能である。同一遺伝子の中でも異なる標的配列に対して複数のプローブを設計することで、変異体においてRNAのどの部分で欠失が起こっているかを調べることもできる[3]。

利点と欠点

ノーザンブロッティングと同様に遺伝子発現を解析する手法として、RT-PCR、ヌクレアーゼプロテクションアッセイ（英語版）、DNAマイクロアレイ、RNA-seq（英語版）、SAGE法などが挙げられ、それぞれが場面に応じて使い分けられている[5][6]。例えばそのうちマイクロアレイを例にとると、この手法は通常1から少数の遺伝子のみを対象にするノーザンブロッティングと比べ、何千もの遺伝子の発現を同時に可視化できる点が優れている[19][21]。逆にノーザンブロッティングは、マイクロアレイでは検出できないような遺伝子発現における微小な差異を検出できることがある[21]。

RT-PCRと比較すると、ノーザンブロッティングは感度が低いという欠点があるものの、特異性が非常に高いため、偽陽性シグナルを検出してしまうことが少ないという利点がある[13]。その他、上述のようにRNAのサイズを検出し選択的スプライシングなどについても解析できる点や、メンブレンが数年単位で保管可能であるため追実験が可能である点などがノーザンブロッティングの利点として挙げられることがある[13]。

ノーザンブロッティングを行う際に頻発するトラブルとして、サンプルに残存していた、または環境中から混入したリボヌクレアーゼ(RNase)によってRNAサンプルが分解されてしまうことが挙げられる。これは使用器具を適切に滅菌すること、ジエチルピロカーボネート(DEPC)といったRNase阻害剤を用いることなどによって予防できる[6]。また、ノーザンブロッティングで用いられるDEPC、エチジウムブロマイド、放射性同位体といった薬品は、人体にとって危険なものが多いことにも注意が必要である[13]。

関連項目

出典 

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外部リンク

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